Le premier cas reconnu de KHV s’est produit au Royaume-Uni en 1996 (Haenen et al. 2004). Depuis lors, d’autres cas ont été confirmés dans presque tous les pays qui cultivent des carpes koï et/ou des carpes communes, à l’exception de l’Australie (Hedrick et al. 2000; Haenen et coll. 2004, Pokorova et coll. 2005). Cette fiche d’information est destinée à informer les vétérinaires, les biologistes, les producteurs de poissons et les amateurs de la maladie du KHV.
- Qu’Est-Ce Que Le KHV ?
- Quels sont les signes du KHV?
- Comment les poissons sont-ils infectés par le KHV?
- Comment la température de l’eau affecte-t-elle la maladie du KHV?
- Comment savoir si mes poissons ont du KHV ?
- Existe-t-il un traitement contre le KHV?
- Comment prévenir le KHV ?
- Qui dois-je contacter si je soupçonne que mes poissons ont du KHV ou si je veux plus d’informations?
- Quelles sont les considérations réglementaires associées au KHV?
- Les humains peuvent-ils contracter le KHV?
- En quoi le KHV diffère-t-il des autres maladies virales?
- Résumé
Qu’Est-Ce Que Le KHV ?
L’herpèsvirus des koï (également connu sous le nom d’herpèsvirus des Cyprinidés 3; CyHV3) est classé comme un virus à ADN double brin appartenant à la famille des Alloherpesviridae (qui comprend les herpèsvirus des poissons). Le travail de Waltzek et de ses collègues (Waltzek et al. 2005, 2009) ont révélé que le KHV est bien un herpèsvirus, basé sur la morphologie et la génétique du virus, et est étroitement lié au virus de la variole de la carpe (herpèsvirus Cyprinide 1; CyHV1) et au virus de la nécrose hématopoïétique du poisson rouge (herpèsvirus Cyprinide 2; CyHV2). L’herpèsvirus des carpes koï a été diagnostiqué chez les carpes koï et les carpes communes (Hedrick et al. 2000; OATA 2001). Les autres cyprinidés (p. ex. les poissons rouges; Carassius auratus et la carpe herbivore; Cténopharyngodon idella) et les espèces non cyprinidés ne sont généralement pas affectés par le KHV, bien que l’ADN du KHV ait été détecté dans les tissus des poissons rouges et d’autres espèces de poissons exposées au virus à l’aide de méthodes de test par réaction en chaîne par polymérase (PCR) (El-Matbouli et al. 2007, Sadler et coll. 2008, Bergmann et coll. 2009, Kempter et coll. 2009). Poisson rouge hybride (poisson rouge mâle C. auratus x carpe commune femelle C. carpio) étaient modérément résistants à la mortalité à la suite d’une infection expérimentale par le KHV (Hedrick et al. 2006). La question de savoir si des carpes communes hybrides, d’autres cyprinidés ou des espèces non cyprinidés peuvent héberger le KHV et transmettre plus tard la maladie à des variétés naïves de carpes communes reste controversée.
La maladie à herpèsvirus de Koï (KHVD) affecte les poissons de divers âges, entraînant souvent une mortalité de 80 à 100 % chez les populations sensibles lorsque la température de l’eau se situe entre 60 ° et 77 °F (16 ° et 25 °C) (Haenen et al. 2004). Cependant, comme pour d’autres infections herpèsvirales, le KHV peut demeurer dans les poissons infectés à vie; par conséquent, les poissons qui se remettent d’une éclosion de KHV devraient être considérés comme porteurs du virus (Petty et Fraser, 2005, St. Hilaire et al. 2005, Eide et coll. 2011).
Quels sont les signes du KHV?
Les signes cliniques du KHV sont souvent non spécifiques. La mortalité peut commencer très rapidement dans les populations infectées, les décès commençant dans les 24 à 48 heures suivant l’apparition initiale des signes cliniques. Dans les études expérimentales, 82 % des poissons exposés au virus à une température de l’eau de 22 °C (72 °F) sont morts au cours des 15 premiers jours (Ronen et al. 2003). L’infection par le KHV peut produire des lésions branchiales sévères qui se présentent sous la forme de marbrures branchiales avec des taches rouges et blanches (Figure 1) (peut être similaire aux signes de la maladie de columnaris; publication SRAC #479b sur la maladie de Columnaris). Les taches blanches sont dues à la nécrose (mort) du tissu branchial. Les lésions branchiales causées par la maladie du KHV sont les signes cliniques les plus courants chez les carpes koï atteintes. D’autres signes externes de KHV peuvent inclure des branchies saignantes, des yeux enfoncés et des taches pâles sur la peau. Certains koï infectés par le KHV peuvent avoir un nez cranté (Goodwin 2012). Dans certains cas, les infections bactériennes et parasitaires secondaires peuvent être le problème le plus évident, masquant les dommages causés par l’infection virale primaire. L’examen microscopique des biopsies branchiales révèle souvent un nombre élevé de bactéries et de parasites divers (Hedrick et al. 2000; Haenen et coll. 2004).
Les signes internes de KHVD sont variables et non spécifiques, mais peuvent inclure des adhérences supérieures à la normale dans la cavité corporelle et un élargissement et/ ou un aspect marbré des organes internes (Hedrick et al. 2000; Haenen et coll. 2004).
Sur le plan comportemental, les poissons atteints restent souvent près de la surface, nagent léthargiquement et peuvent présenter une détresse respiratoire et une nage non coordonnée.
Comment les poissons sont-ils infectés par le KHV?
Les méthodes de propagation (transmission) du KHV comprennent le contact direct avec des poissons infectés, le contact avec des liquides provenant de poissons infectés; et le contact avec de l’eau, de la boue ou d’autres fomites / vecteurs qui sont entrés en contact avec des systèmes contaminés. Le virus infectieux pénètre principalement dans les poissons sensibles par la peau, y compris les tissus branchiaux (Costes et al. 2009). Selon la température de l’eau, les poissons sensibles exposés au KHV peuvent soit être infectés, développer une maladie et mourir, soit survivre à l’éclosion initiale de la maladie et devenir porteurs du virus (Petty et Fraser, 2005, St. Hilaire et al. 2005, Eide et coll. 2011). Les poissons qui survivent à l’exposition au KHV ou qui reçoivent le vaccin contre le KHV peuvent être immunisés et développer un niveau de protection contre le virus, bien que la durée de la protection demeure inconnue (Ronen et al. 2003, Perelberg et coll. 2008). Les survivants d’épidémies de KHV peuvent devenir porteurs du virus et peuvent être capables de propager la maladie aux poissons sensibles. Ces poissons porteurs peuvent ne pas montrer de signes d’infection par le KHV, bien qu’ils puissent être porteurs et/ou excréter le virus.
Comment la température de l’eau affecte-t-elle la maladie du KHV?
Les épidémies de maladie du KHV (KHVD) surviennent généralement au printemps et en automne lorsque la température de l’eau se situe entre 60 ° et 77 °F (16 ° et 25 °C) avec une période d’incubation de 7 à 21 jours selon la température de l’eau (Haenen et al. 2004). Le KHVD à des températures aussi basses que 60 ° F (15,5-16 ° C) a été signalé dans des épidémies de carpes courantes au Japon, et des essais expérimentaux ont montré que le virus peut induire une mortalité allant jusqu’à environ 82 ° F (28 ° C). Les températures plus chaudes de l’eau induisent plus rapidement des maladies cliniques que les poissons maintenus à des températures plus basses. À des températures d’eau plus basses (p. ex., 55 ° F), le virus peut infecter les poissons sans induire de signes cliniques de maladie, mais lorsque des températures permissives de l’eau sont à nouveau ressenties, les poissons présentent des signes typiques de KHV et peuvent mourir (Gilad et al. 2003, St. Hilaire et coll. 2005).
Comment savoir si mes poissons ont du KHV ?
Un diagnostic positif de KHV nécessite l’assistance d’un vétérinaire ou d’un spécialiste de la santé des poissons et d’un laboratoire de diagnostic des maladies du poisson. L’identification diagnostique du KHV peut être réalisée par plusieurs méthodes directes et indirectes. Les méthodes directes sont des procédures qui détectent un virus réel ou des « morceaux » de virus. Les méthodes indirectes sont des procédures qui déterminent si un poisson a monté une réponse immunitaire contre le KHV après une exposition au virus en mesurant les taux d’anticorps anti-KHV dans le sang (Adkison et al. 2005, St-Hilaire et coll. 2005, 2009).
Les méthodes directes utilisées pour identifier le KHV comprennent: 1) l’isolement et l’identification du virus (c.-à-d. la croissance du virus) à l’aide d’une lignée cellulaire sensible telle que la lignée cellulaire Koi Fin (KF-1) {croissance optimale observée à des températures comprises entre 59 ° et 77 ° F (15 ° et 25 ° C)} et 2) Les techniques de PCR (c.-à-d. les tests de présence d’ADN KHV). Pour ces tests de diagnostic direct, des tissus sont prélevés sur des poissons qui sont prélevés vivants puis euthanasiés. L’isolement et la détection du virus dans les tissus des poissons morts plus de quelques heures peuvent ne pas être fiables. Des tests de diagnostic direct non létaux sont disponibles sur des échantillons tels que du sang, du matériel fécal, du mucus et des pinces branchiales (c.-à-d. des biopsies), mais ces tests peuvent donner des résultats moins définitifs ou moins précis. Un test de culture cellulaire positif indique une infection active et continue par le KHV. La détection positive de l’ADN du KHV par PCR indique que le virus est présent, de sorte qu’il peut être utilisé pour confirmer la maladie du KHV chez des poissons cliniquement malades et peut-être même pour identifier les porteurs (Eide et al. 2011).
Une méthode de test indirect pour le KHV qui a été largement utilisée est le test immuno-enzymatique (ELISA). Le KHV ELISA utilise un échantillon de sang et est donc un outil de diagnostic non létal. Les données ELISA peuvent fournir la preuve qu’un poisson est en train de monter, ou a déjà monté, une réponse immunitaire (c.-à-d. la production d’anticorps) contre le KHV. Un test ELISA positif pour le KHV indique que le poisson a produit des anticorps contre le KHV après une exposition antérieure au virus. Cependant, les cellules immunitaires productrices d’anticorps mettent du temps à s’activer et, avec le temps, si un poisson n’est plus malade, la production d’anticorps anti-KHV peut ralentir ou s’arrêter. Par conséquent, ELISA peut ne pas être en mesure de détecter les anticorps contre le KHV si l’infection s’est produite des années auparavant ou si le poisson n’a pas encore eu le temps de produire des anticorps.
Les résultats négatifs des tests directs ou indirects ne signifient pas nécessairement que les poissons ne sont pas porteurs. Il n’y a pas de test qui détecte définitivement tous les porteurs ou survivants.
Existe-t-il un traitement contre le KHV?
Il n’existe aucun traitement contre le KHV. Les médicaments antiviraux ne sont pas disponibles pour traiter le KHV ou toute autre maladie virale des poissons d’élevage. Des études ont montré que les koi peuvent survivre à une épidémie de KHV si la température de l’eau est augmentée à 86 °F (30 °C) pendant l’épidémie (Ronen et al. 2003). Cependant, cette technique n’augmente que marginalement les taux de survie, et l’augmentation artificielle de la température de l’eau au-dessus de 80 ° F dans les installations de rétention peut entraîner une augmentation de la fréquence d’autres maladies bactériennes et parasitaires plus courantes. Les températures élevées de l’eau ne sont généralement pas recommandées pour l’élevage de routine et la gestion des carpes koï et des carpes communes. De plus, et plus important encore, les koï qui survivent à une épidémie de KHV ou ceux exposés à des températures élevées de l’eau peuvent devenir porteurs du virus. Ces koïs porteurs sont une source de la maladie chez les poissons sensibles lorsque les conditions sont appropriées pour l’excrétion virale et l’infection. En raison d’une exposition et d’une immunisation antérieures au virus, les poissons porteurs ne succomberont généralement pas à la maladie du KHV ni ne présenteront de signes d’infection clinique.
Récemment, l’USDA APHIS a approuvé l’utilisation d’un vaccin vivant atténué pour la prévention du KHVD, à administrer à la carpe commune ou aux carpes koï de plus de 100 grammes (le vaccin n’est pas approuvé pour une utilisation dans les géniteurs). Le vaccin, développé à l’origine par un groupe de recherche israélien (Ronen et al. 2003), génère des titres élevés d’anticorps anti-KHV et protège la carpe commune ou les carpes koï vaccinées lors d’un défi viral ultérieur (Ronen et al. 2003, Perelberg et coll. 2008). Cependant, des préoccupations ont été soulevées concernant l’efficacité du vaccin et la durée de la protection offerte aux poissons vaccinés. À l’heure actuelle, on ignore si les poissons vaccinés deviennent porteurs de la souche vaccinale ou s’ils sont protégés contre l’infection par la souche de type sauvage qui constituerait une menace pour la carpe commune non vaccinée. Un autre défi en ce qui concerne le vaccin est qu’aucun test de diagnostic n’est disponible dans le commerce qui puisse différencier les poissons vaccinés des poissons infectés / exposés naturellement.
Parce que les épidémies de KHV ont causé d’importantes pertes dans les installations de koi et de carpe commune et parce que l’on craint que les survivants soient porteurs, toute personne atteinte de koi ayant reçu un diagnostic de KHV devrait envisager le dépeuplement (en éliminant toute la population) comme une option logique. Tous les matériaux et systèmes que les poissons infectés ont contactés doivent être nettoyés et désinfectés.
Les particules virales dans l’eau de l’environnement peuvent rester infectieuses jusqu’à trois jours (Shimizu et al. 2006). Cependant, des protocoles de désinfection courants (voir ci-dessous) peuvent être utilisés pour éliminer le virus des systèmes d’eau et de l’équipement. Les biofiltres et les milieux de biofiltre exposés au virus doivent également être soigneusement nettoyés et désinfectés. Avant la désinfection, l’équipement doit être nettoyé des débris ou des accumulations organiques, car ceux-ci peuvent réduire l’efficacité du désinfectant. Des solutions de chlore (p. ex., de l’eau de Javel domestique) peuvent être utilisées pour désinfecter de gros équipements ou systèmes sans poisson. Le protocole recommandé pour le chlore est de 200 ppm (200 mg/L) pendant une heure (Noga, 1996). Le dosage correct de cet ingrédient actif dépend du type de chlore utilisé. Pour l’eau de javel domestique, qui est de 5,25% d’hypochlorite de sodium par litre, 35 millilitres par gallon d’eau donneront une concentration finale de 200 mg / L.
Les composés d’ammonium quaternaire (CAQ) peuvent également être utilisés pour les systèmes et les équipements. Les composés d’ammonium quaternaire sont plus doux sur les filets que les solutions de chlore. La concentration QAC recommandée pour la désinfection est de 500 ppm (500 mg/L) pendant une heure (Noga, 1996). Le dosage approprié des QAC dépend du type / de la concentration dans le mélange utilisé, car les concentrations varient en fonction du produit utilisé. Les différents produits de QAC peuvent varier de 10 % à 50 % d’ingrédient actif. Par exemple, Roccal-D Plus® (Pharmacia & Upjohn Company, Pfizer) contient environ 24 % de principe actif; par conséquent, une concentration finale de traitement de 500 mg/L nécessiterait environ 7,9 mL de Roccal-D Plus® par gallon d’eau. Rincer abondamment après utilisation de tout type de désinfectant pour éliminer les résidus de désinfectant qui peuvent tuer les poissons.
Comment prévenir le KHV ?
Avant d’obtenir du poisson, demandez d’abord au fournisseur s’il y a eu des pertes importantes inexpliquées dans la population. La surveillance et les tests de KHV peuvent être effectués par des tests de laboratoire, alors demandez aux fournisseurs si des tests de KHV ont été effectués et demandez une copie de la documentation des résultats de laboratoire. La meilleure façon de prévenir le KHV est de connaître vos fournisseurs de poisson et d’avoir une bonne relation de travail avec eux.
La quarantaine (c’est-à-dire la séparation des autres koi) est la méthode la plus fiable pour éviter l’introduction d’agents pathogènes dans un étang ou une installation. Pour mettre en œuvre une procédure de quarantaine efficace, tous les nouveaux poissons doivent être conservés dans un système séparé, idéalement dans un bâtiment ou une zone différente du poisson résident. Les poissons résidents doivent être nourris, manipulés et entretenus avant le nouveau poisson. Les poissons mis en quarantaine nécessitent un équipement dédié tel que des filets, des seaux et des tuyaux de siphon qui ne sont utilisés que pour eux. En outre, les bains de pieds et les lavages à la main doivent être utilisés par toute personne entrant et sortant de la zone de quarantaine. Les poissons doivent être mis en quarantaine pendant au moins 30 jours. Spécifiquement pour le KHV, les nouveaux koï doivent être mis en quarantaine dans une eau à 75 ° F (24 ° C) pendant au moins 30 jours. À la fin de la période de quarantaine, tout poisson malade doit être examiné par un vétérinaire et / ou un laboratoire de diagnostic pour exclure le KHV ou d’autres maladies. Si tous les poissons semblent en bonne santé, des échantillons de sang doivent être prélevés sur ces poissons mis en quarantaine et soumis à la détection d’anticorps par ELISA. (Atkinson et coll. 2005; St. Hilaire et coll. 2009)
Les amateurs de koi sont encouragés à promouvoir l’utilisation de spectacles de koi de style anglais, qui séparent les différentes sources (propriétaires) de koi pendant le spectacle et le jugement. De plus, des filets séparés, des tuyaux de siphon et d’autres équipements doivent être utilisés par tous les participants au spectacle pour leurs propres poissons. Le spectacle à la japonaise, dans lequel des koï de différents propriétaires sont placés ensemble dans le même réservoir, peut entraîner la propagation de maladies chez les poissons sensibles. Quel que soit le style d’exposition, les poissons qui reviennent des expositions doivent être mis en quarantaine pendant au moins 30 jours et maintenus à 75 ° F avant d’être replacés dans la population générale. Pour plus de sécurité, un test d’anticorps par prélèvement sanguin peut être utile. Les survivants (poissons qui ont déjà été exposés à la maladie du KHV) ne devraient jamais être emmenés à un spectacle de carpes koï.
À la fin de la période de quarantaine et avant de placer tous les poissons ensemble, placez plusieurs nouveaux koi avec plusieurs koi de la population établie dans une zone séparée du reste de la population établie et surveillez-les pour détecter les signes de maladie. Ce « test » peut aider à déterminer avec un plus petit nombre de poissons si le fait de regrouper les deux populations après la quarantaine pourrait poser des problèmes. Malheureusement, il n’y a aucune garantie.
Qui dois-je contacter si je soupçonne que mes poissons ont du KHV ou si je veux plus d’informations?
Les producteurs, grossistes et détaillants commerciaux de poissons en Floride peuvent contacter l’un des laboratoires de Diagnostic des maladies du poisson de l’Université de Floride suivants *:
Dans le nord de la Floride:
Thomas B. Waltzek
Laboratoire de Maladies Vétérinaires fauniques et Aquatiques (WAVDL)
Pathobiologie aquatique
Université de Floride
Bldg.471, 2173 Mowry Route
Gainesville, Floride 32611
(352) 273-5202
Courriel : [email protected]
Dans le sud de la Floride:
Roy P. E. Yanong ou Deborah Pouder
Laboratoire d’Aquaculture Tropicale
Laboratoire de diagnostic des maladies du poisson
Université de Floride
1408 24th St. SE 33570
Ruskin, Floride
(813) 671-5230
http://tal.ifas.ufl.edu
* Veuillez noter: Ces laboratoires acceptent les cas des producteurs de poisson commerciaux, des grossistes et des détaillants uniquement.
Les amateurs et les propriétaires personnels d’étangs à carpes koï (ou les producteurs de poissons commerciaux, les grossistes et les détaillants en dehors de la Floride) peuvent rechercher un vétérinaire aquatique ou un laboratoire de diagnostic aquatique dans leur région sur le site Web AquaVetMed (http://www.aquavetmed.info) ou http://www.myveterinarian.com/avma/vclPublic/ #.
Quelles sont les considérations réglementaires associées au KHV?
En janvier 2007, le KHV a été ajouté à l’Organisation Mondiale de la Santé Animale (OIE; www.oie.int ) liste des maladies pour les poissons. En raison de cette liste, le Service d’inspection de la Santé Animale et végétale du Département de l’Agriculture des États-Unis (USDA APHIS) demande aux vétérinaires accrédités et aux laboratoires de diagnostic de signaler les cas positifs de KHV au vétérinaire en chef de la région (AVIC) de l’État d’origine du poisson. Cependant, aucune information sur le client (par exemple, nom, adresse) ne sera demandée. Ces informations aideront l’USDA à déterminer quelle est la prévalence du KHV aux États-Unis. L’APHIS de l’USDA n’a pas d’exigences sanitaires d’importation spécifiques pour le KHV pour les koi ou d’autres poissons se déplaçant entre les États ou à l’international. Il n’y a pas de dépeuplement obligatoire pour les populations de koï infectées par le KHV. Il appartient au propriétaire de ces animaux et à leur vétérinaire de décider de la voie à suivre.
Les éleveurs, les revendeurs, les exposants et les vétérinaires de koï doivent être au courant des réglementations sanitaires internationales relatives aux exportations concernant les mouvements de poissons vaccinés contre le KHV. Les exigences d’importation pour certains pays spécifient que les poissons vaccinés contre le KHV ne seront pas autorisés à entrer. Veuillez consulter le site Web de l’APHIS pour connaître les exigences sanitaires nationales et internationales (énumérées respectivement): http://www.aphis.usda.gov/animal_health/animal_dis_spec/aquaculture/aquastates.shtml
http://www.aphis.usda.gov/regulations/vs/iregs/animals/
Ou contactez le bureau local de l’USDA APHIS VS pour obtenir de l’aide (http://www.aphis.usda.gov/animal_health/area_offices/).
Les humains peuvent-ils contracter le KHV?
Il n’y a pas de préoccupation zoonotique avec le KHV. L’herpèsvirus responsable de la maladie du KHV chez les poissons ne causera pas de maladie chez l’homme.
Il est important de différencier le KHV des autres virus qui peuvent causer des maladies chez la carpe et les carpes koï. Deux autres maladies virales importantes reconnues chez la carpe sont la virémie printanière de la carpe (SVC) et la variole de la carpe (herpèsvirus des Cyprinidés 1; CyHV1). Ces maladies ont des implications significativement différentes en matière de gestion et de réglementation (tableau 1). Le KHV et le SVC sont maintenant répertoriés comme maladies du poisson à déclaration obligatoire par l’OIE. Cependant, aux États-Unis, la SVC est considérée comme une maladie étrangère ou exotique (non présente) des espèces sensibles aquacoles et, à ce titre, le vétérinaire ou le laboratoire accrédité est tenu de notifier les flambées confirmées aux responsables des Services vétérinaires de l’USDA APHIS qui, à leur tour, en informeront l’OIE. En comparaison, le KHV est considéré comme répandu aux États-Unis. L’APHIS de l’USDA demande aux vétérinaires et laboratoires accrédités de signaler les cas de KHV au vétérinaire en chef de la région (AVIC) de l’État où se produit l’épidémie. Les informations aideront l’USDA à déterminer quelle est la véritable prévalence du KHV aux États-Unis, Cependant, chaque épidémie de KHV ne sera pas notifiée à l’OIE.
La virémie printanière de la maladie de la carpe est causée par un virus à ARN simple brin, le Rhabdovirus carpio, et a été rapportée chez la carpe et les carpes koï communes (C. carpio), la carpe herbivore (C. idella), la carpe à grosse tête (Aristichthys nobilis), la carpe argentée (Hypophtalmichthys molitrix), le Carassin (Carassius carassius) et le poisson rouge commun (C. auratus). Pour plus d’informations sur la SVC, voir le tableau 1 et la fiche d’information UF/ IFAS « Virémie printanière de la carpe » (VM-142).
La variole de la carpe (herpèsvirus Cyprinidé 1; CyHV1) est causée par un herpèsvirus différent du KHV (Herpèsvirus cyprini) qui a une large distribution géographique et affecte la carpe commune et les carpes koï. La variole de la carpe provoque généralement des excroissances lisses et surélevées (« masses ressemblant à des verrues ») sur la peau et les nageoires des poissons plus âgés, mais peut être associée à une mortalité élevée chez les alevins de moins de deux mois (Sano et al. 1990). La variole de la carpe n’est pas une maladie à déclaration obligatoire ou à déclaration obligatoire aux États-Unis Des températures de l’eau supérieures à 20 ° C (68 ° F) aident à réduire la croissance de la peau et des nageoires des poissons plus âgés, mais n’éliminent pas le virus des poissons (tableau 1). Chez les poissons matures, la variole de la carpe est généralement une maladie non létale et auto-limitante (c.-à-d. que la plupart, sinon la totalité, des excroissances se résorberont d’elles-mêmes à des températures plus chaudes).
Tableau 1. Comparaison de l’herpèsvirus koï (KHV), de la virémie printanière de la carpe (SVC) et de la variole de la carpe. | ||||
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Type de virus de l’herpès simplex Koï | Virémie printanière de la carpe | Variole de la carpe | ||
Synonymes | Virus de l’herpès simplex cyprinide de type 3 (CyHV-3); virus de la néphrite et de la nécrose branchiale de la carpe (CNGV) | Hydropisie infectieuse de la carpe | Virus de l’herpès simplex Cyprinide de type 1 (CyHV-1); variole koï; virus de l’herpès de la carpe; prolifération épidermique herpétique chez la carpe (HEPC); septicémie de type virus de l’herpès simplex chez la carpe (HSC) | |
Abréviation | KHV; CyHV-3 | SVC; SVCV | CHV; CyHV-1 | |
Agent viral | type de virus de l’herpès simplex (virus à ADN) |
Rhabdovirus Rhabdovirus carpio (virus à ARN) |
type de virus de l’herpès simplex type de virus de l’herpès simplex cyprini (virus à ADN) |
|
Espèces touchées | Carpe commune; koi; d’autres espèces peuvent être porteuses du virus |
Carpe commune; koi; poisson rouge; carpe herbivore; carpe à grosse tête; carpe argentée; et Carassin | Carpe commune; koï | |
Température optimale de l’eau | 64-81 ° F (18-27 ° C) | 41-64 ° F (5-18 ° C) | <68° F (< 20 ° C) | |
Transmission | Contact direct; matière fécale; eau/ boue infectée; équipement; vecteurs |
Contact direct; matière fécale; eau / boue infectée; équipement; vecteurs |
Contact direct; matière fécale; eau / boue infectée; équipement; vecteurs |
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Sensibilité à l’âge | Jeunes plus sensibles que matures | Jeunes plus sensibles que matures | Jeunes plus sensibles que matures | |
Signes Cliniques | ||||
Comportement | Léthargie; nager près de la surface; détresse respiratoire; comportement erratique | Léthargie; bas sur le fond du réservoir ou de l’étang; nage maladroite | Aucun | |
Nécrose branchiale externe | ; yeux enfoncés; nez cranté; infections bactériennes et parasitaires secondaires | Exophtalmie; hémorragie cutanée ponctuelle; distension abdominale; mucus provenant de l’évent | Lésions cutanées lisses ressemblant à des verrues surélevées | |
Interne | Peu de signes variables | Œdème; inflammation; hémorragies ponctuelles de nombreux organes, y compris la vessie natatoire | Aucun | |
Méthodes de test | Méthodes directes (isolement du virus et PCR); méthodes indirectes (ELISA et VN) | Méthodes directes (isolement de virus et PCR) | Méthodes directes (isolement de virus) | |
États du transporteur | Oui | Oui | Oui | |
Statut réglementaire | À DÉCLARATION obligatoire sans conséquences obligatoires | À DÉCLARATION obligatoire avec conséquences obligatoires; règlements d’importation | Aucun | |
Traitement | Aucun | Aucun | Aucun | |
Prévention/contrôle | Dépeupler les stocks infectés; pratiquer une bonne biosécurité, y compris la quarantaine et les tests; acheter du poisson d’une source réputée connue; garder les espèces sensibles séparées | Dépeupler les stocks infectés; pratiquer une bonne biosécurité, y compris la quarantaine; acheter du poisson d’une source réputée connue; garder les espèces sensibles séparées | Dépeuplement généralement pas nécessaire pour les poissons plus âgés; pratiquer une bonne biosécurité, y compris la quarantaine; acheter du poisson d’une source réputée connue; garder les espèces sensibles séparées | Dépeuplement généralement pas nécessaire pour les poissons plus âgés; pratiquer une bonne biosécurité, y compris la quarantaine; acheter du poisson d’une source réputée connue |
Désinfection | Chlore (200 ppm pendant 1 heure); composés d’ammonium quaternaire (500 ppm pendant 1 heure) | Chlore (500 ppm pendant 10 minutes); ozone; rayonnement gamma / UV; pH 10,0; chaleur à 60 ° C pendant 15 min |
Chlore (200 ppm pendant 1 heure); composés d’ammonium quaternaire (500 ppm pendant 1 heure) |
Résumé
L’herpèsvirus des carpes koï est une maladie dévastatrice des carpes koï ornementales et des carpes communes. Il existe plusieurs méthodes pour détecter divers états de l’infection. Il n’existe aucun traitement efficace pour débarrasser les poissons du virus. Les bonnes pratiques de gestion, y compris la quarantaine, les tests et l’élevage approprié, sont des éléments essentiels à la prévention de cette maladie pour tous les producteurs, revendeurs et amateurs de carpes koï et de carpe commune.
Août 2013