Identifikasjon av funksjonelle markørproteiner i pattedyrsvekstkeglen

Resultater

Storskala Identifikasjon Av Proteiner i Rottehjernevekstkegler.

Vårt første mål var å identifisere et stort antall proteiner uttrykt i vekstkjegler, inkludert proteiner som er felles for mange celletyper og proteiner involvert i vekstkjeglespesifikke funksjoner. For å gjøre dette separerte vi først proteiner fra den utviklende rotteforgrunnen via subcellulær fraksjonering for å oppnå EN gcp-fraksjon(Fig. 1A). Vi fikk deretter EN GCM via hypotonisk behandling AV gcp-fraksjonen (se detaljer I SI-Tekst) med sikte på å identifisere mindre membranproteiner i vekstkeglen. Deretter brukte vi flerdimensjonal væskekromatografi-tandem massespektrometri (LC/MS/MS) for å identifisere unike proteiner i prøven, fordi metoden har vist seg å være egnet til storskala proteinidentifikasjon (15, 16). Metoden viste seg kraftig i denne studien også, med totalt 945 arter av proteiner identifisert I GCP og GCM(Fig. 1B). Fordi <50 av proteinene tidligere var kjent for å bli uttrykt i pattedyrs vekstkegle, gir identifisering av dette store antallet proteiner et vell av molekylær informasjon om pattedyrs vekstkegler (2, 4, 17). Til sammenligning analyserte vi også voksne synaptosomer, motstykket til vekstkeglen, og identifiserte 1,407 arter av synaptosomale proteiner (dvs.dobbelt så mange som VI fant FOR GCP og GCM). Omtrent 65% av de synaptosomale proteinene vi identifiserte finnes ikke I GCP-eller GCM-settene (Fig. 1C), som kan skyldes at et stort antall proteiner nylig syntetiseres og legges til synaptiske komponenter for synaptisk overføring etter synaptogenese. Vi lyktes i å identifisere henholdsvis 96 og 141 proteiner i gcp eller GCM, som ikke ble funnet i synaptosomene(Fig. 1C).

Verifisering Av Vekstkegle Lokalisering Antyder En Ubetydelig Falsk Positiv Rate.

vi neste ønsket å bestemme spesifisiteten av vår proteomikk tilnærming,; dvs. å bestemme falsk-positiv rate. Generelt bør en sammenligning av en gitt fraksjon gjøres til en annen biokjemisk fraksjon. Imidlertid kan ingen fraksjoner fra den utviklende hjernen fremstilles med sammenlignbar renhet TIL gcp-eller GCM-fraksjonene. For å lette generering av et sammenligningssett utførte vi systematisk immunodeteksjon av en delmengde av proteinene i dyrkede kortikale nevroner (Se Tabell S4, Tabell S5, Tabell S6 og Tabell S7). Vi ekskluderte allestedsnærværende eller vanlig uttrykte proteiner som metabolske enzymer og molekylære chaperoner, slik at vi i stedet kunne fokusere på proteiner som kan være spesielt relevante for vekstkeglespesifikke funksjoner. Totalt sett så vi på fordelingene av 131 proteiner (dvs. ≈15% av proteinene vi identifiserte). Dataene bekrefter at i kultiverte rotte kortikale nevroner er alle proteinene vi testet detekterbare i vekstkegleområdet(Fig . 2 Og Tabell S4). Faktisk kunne ingen proteiner vi testet detekteres i andre aksonale regioner, men ikke i vekstkeglen, noe som tyder på en svært lav falsk positiv hastighet og validering av vår overordnede tilnærming. I tillegg inneholdt våre proteomiske data I GCP eller GCM ingen transkripsjonsfaktorer, noe som tyder på at forurensning med kjernekomponenter også er ubetydelig (Fig. 1D, Tabell S1 Og Tabell S2).

Fig. 2.

immunfluorescens kvantifisering AV GCP. Horisontal akse, FI-forhold (vekstkegle/distal axon), Lengdeakse, arealforhold (vekstkegle/distal axon). Den horisontale aksen viser gc-akkumuleringsindeksen (et forhold på 1,0; den vertikale svarte stiplede linjen indikerer at et gitt protein er jevnt fordelt i distal axon versus vekstkeglen). FI-forholdet FOR GAP-43 (Gap43; 1.315) vises som en blå prikket linje. Proteiner i øvre høyre region av grafen er mer konsentrert i vekstkeglen enn i axonen. Mange av disse er aktinbindende proteiner og proteiner involvert i vesikulær handel. FI-forholdet mellom hvert protein ble testet Ved Å bruke Kruskal-Willis statistiske test (46) MED GAP-43 som sammenligningspunkt. Proteinene ble gruppert basert på det tosidige 95% konfidensintervallet, dvs. var det høyere enn, lik ELLER mindre ENN GAP-43 (vist i henholdsvis rød, blå og svart). Merk at Som forventet Er F-actin (som påvist med rhodaminfalloidin; i rødt), som er konsentrert i vekstkeglen, og β-tubulin (grønn), som ligger på høyere nivåer i axonen enn i vekstkeglen, fjernt fra hverandre på grafen. Se Tabell S4 for detaljert informasjon.

Proteiner Mer Konsentrert I Vekstkeglen Enn I Distal Axon.

vi søkte deretter å bestemme i hvilken grad proteinene identifisert i vår studie er spesifikke eller lokalt spesifikke for vekstkeglen. For å gjøre dette, sammenlignet vi fordelingene av proteinene i vekstkegler med deres fordeling i distale axoner. I den grad metoden er kvantitativ, kunne vi også sammenligne de relative konsentrasjonene av proteiner i vekstkegler versus distale aksoner(Fig . 2 Og Tabell S4). Vi definerte vekstkjegleakkumuleringsindeksen som forholdet mellom fluorescensintensitet (FI) i vekstkjeglen sammenlignet med det i distalaksonen (Fig. 2, Tabell S4, Si Tekst Og Fig. S1). Vi brukte også en annen indeks, dvs. arealforholdet, for å undersøke distribusjonsmønstrene til hvert protein(Fig. S2). Vekstkegleakkumuleringsindeksen er en indikasjon på det relative nivået av proteinakkumulering i vekstkeglen. Ved å bruke den statistiske Wilcoxon rank-sum-testen til våre resultater, lette streng klassifisering av de undersøkte proteinene sammenlignet med GAP-43, viste vår kvantifisering av den systematiske immunostholdende tilnærmingen ved hjelp av denne indeksen at så mange som 69 proteiner identifisert av proteomikk ble detektert på høyere nivåer i vekstkegleområdet enn i distal axon. Disse proteinene ser ut til å være på mye høyere nivåer i vekstkegler enn den for tiden etablerte vekstkeglemarkørproteingapet-43 (7) (Fig. 2, vist i rødt). Vi fant også at for 33 proteiner overlapper de statistiske feilområdene MED GAP-43, og dermed kategoriserer vi dette settet av proteiner som konsentrert i vekstkeglen i samme grad SOM GAP-43(Fig . 2, vist i blått).

Rnai Analyse Viser Relevans For Axon Lengde og Funksjonelle Markører Av Vekst Kjegle.

Vi brukte En RNAi – basert tilnærming for å teste rollene til markørproteinkandidater i aksonal vekst. Aktivitetsinduserende aksonal vekst ble vurdert ved å måle aksonal lengde (Se SI Tekst; for bekreftelse av knockdown og spesifisitet, Se Også Fig. S1). Vi valgte 68 gener For RNAi-behandling og fant at forstyrrelse av 17 av dem førte til kortere aksonal lengde, ved bruk av en streng ikke-parametrisk test, dvs. Kruskal-Willis-testen (Fig. 3A, Tabell 1 Og Tabell S8). Vi kategoriserer de 17 proteinene som antatte functional growth cone markers (Tabell 1). Tatt i betraktning resultatene av den kvantitative immunostholdende (Fig. 2), disse proteinene kan klassifiseres i proteiner mer konsentrert ENN GAP-43 (proteiner vist i rødt I Fig. 2) eller lik GAP-43 (proteiner vist i blått I Fig. 2). Av disse 17 proteiner, er det fem cytoskeletal proteiner (Tmod2, Cap1, Cotl1, CapZb, Og September 2), fire membran trafficking proteiner (Pacs1, Stx7, Snap25a, Og Rtn1), to GTP-bindende proteiner (Gnai2, Gnao1), to proteiner involvert i små g protein signalering (Farp2 Og Cyfip1), tre signal adapter proteiner (Stropp, FABP7, Og Crmp1), og en reseptor kandidat (Clptm1).

Fig. 3.

Identifikasjon av nGAPs ved RNAi. (A) Gener som påvirker aksonal vekst. Roller for de identifiserte proteinene i vekstkjegleaktivitet ble analysert ved å se Etter RNAi-indusert reduksjon av aksonal vekst. RNAi ble utført som beskrevet (45). De åtte proteinene til venstre for den klekkede linjen har FI-forhold overlegen GAP-43 som dømt statistisk ved Å bruke Kruskal-Willis-testen (rød; også vist i rødt I Fig. 2), og de ni proteinene til høyre for den klekkede linjen har FI-forhold som ligner PÅ GAP-43 som dømt av samme test. De aksonale lengdene AV EGFP-positive nevroner (no siRNA) ble brukt som kontroll (blå; også vist i blått I Fig. 2). Alle siRNAs (unntatt GFP) har P < 0,002 I Wilcoxon rank-sum test (vs kontroll) (46). Dataene vises som middelmådig SEM. Antall nevroner målt er vist i bunnen av hver stolpe. (B) Klassifisering av kandidatvekstkeglemarkørproteiner ved immunolokalisering. Vi definerte C-og P-domenene til en vekstkjegle ved å bruke kvantitativ analyse av immunostaende bilder (diagram øverst, se SI Tekst Og Fig. S2). Vi klassifiserte proteinene i fire grupper: gruppe i (ex. Pacs1), hovedsakelig lokalisert I p-regionen( C P); gruppe II (ex. Syx7), påvist i Både c-og P-regionene( C ≃ P); gruppe III (eks. Gnai2), hovedsakelig lokalisert Til c-regionen( C ≫ P); og gruppe IV (f.eks. Rtn1), spesielt lokalisert I c-regionen (C). I hvert tilfelle er det venstre diagrammet sammendrag av en typisk proteinfordeling for hver gruppe. Immunfluorescensmikrografer av anticandidatproteinantistoffer deteksjon i dyrkede rotte kortikale nevroner er vist i henholdsvis a. Magenta og grønt viser antigenprotein og α-tubulin visninger. De fjerne visningene viser det sammenslåtte bildet. Tre grupper (grupper I-III) er også vist i legenden For Fig. S4. Legg merke til at α-tubulin primært oppdages i aksonet, selv om det også kan påvises i det sentrale området av vekstkjeglen. Se Tabell 1 for en detaljert karakterisering av hvert protein og forkortede navn. (Skala barer: 10 µ.)

Vis denne tabellen:

  • vis inline
  • vis popup
Tabell 1.

Nye kandidater til ngap

De fleste av kandidatene oppført I Fig. 3A avslørte tidligere uoppdagede foreninger med vekstkegler og var funksjonelt relaterte (Tabell 1). Sept2, Cap1 (Et g-actinbindende protein), Snap25a og Cyfip1 har blitt foreslått å spille roller i vekstkegleadferd, basert på studier I PC12-celler eller chick-eller Drosophila-nevroner (21-24), men deres presise roller i pattedyrets vekstkegle er ikke kjent. For de TO gtp-bindende proteinene (Gnai2, Gnao1) og regulatoren (Farp2) er det rapportert om involvering i regulering av en vekstkonusrespons på hemmere, selv om det ikke er kjent om de er nødvendige eller uunnværlige for aksonal vekst (25-27). Så vidt vi vet, ingen av de andre 10 proteiner ble tidligere rapportert å være vekst kjegle regulatorer i pattedyrceller eller virvelløse modellorganismer Som C. elegans eller Drosophila, selv om deres paraloger kan være relatert til neuritt vekst . Vi oppsummerer kort den nåværende informasjonen om disse proteinene I Tabell 1. På det meste 3 av 17 proteiner identifisert i vår studie og testet Med RNAi har tidligere vært involvert i aksonal vekst, noe som tyder på at vi lyktes i effektiv identifisering av flere molekyler involvert i vekst kjegle funksjoner. Totalt peker resultatene Av rnai-analysen på 17 proteiner med høyere ELLER lignende FI-forhold enn GAP-43, noe som gjør dem sterke kandidater for nye nevronvekstassosierte proteiner (nGAPs; refs. 4 og 30).

vekstkjeglen består av morfologisk og funksjonelt distinkte regioner referert til som de sentrale (C) og perifere (P) regionene (31). C-regionen er beriket i vesikler og mikrotubuli og er sannsynligvis involvert i membranutvidelse for aksonal vekst. P-regionen er beriket i aktinfilamenter og genererer sannsynligvis motivkraft. Bruk av tubulin som markør For c-regionen (Se Fig. S3), klassifiserte vi markørproteinene i fire grupper: gruppe I, lokalisert hovedsakelig I p-regionen; gruppe II, oppdaget i begge regioner; GRUPPE III, lokalisert overveiende I C-regionen; og gruppe IV, spesielt lokalisert I C-regionen(Fig. 3B; se Også Fig. S3 og S4).

lokaliseringsmønstrene vi observerte var noe annerledes enn det som kunne ha vært spådd. For Eksempel Har Pacs1 blitt rapportert å være involvert i organell sortering, men i axoner lokaliserer Pacs1 Til p-regionen, hvor F-actin er beriket (Fig. 3B). Et antatt oppløselig adapterprotein, Stropp, som er rapportert som nedstrøms FOR TGF-β signalering (32), Og Clptm1, et ukjent transmembranprotein (33), er også lokalisert I p-regionen. I motsetning til Dette oppdages 2. September nær den tubulin-positive regionen til tross for at Det tidligere ble rapportert å bli funnet I p-domenet I PC12-celler (21). Bare Rtn1, en er-protein og antatt membranhandel regulator (34), var spesielt lokalisert I C-regionen, noe som gjør den potensielt nyttig som En c-region markør.



+