Identificazione di proteine marker funzionali nel cono di crescita dei mammiferi

Risultati

Identificazione su larga scala di proteine nei coni di crescita del cervello di ratto.

Il nostro primo obiettivo era identificare un gran numero di proteine espresse nei coni di crescita, incluse proteine comuni a molti tipi di cellule e proteine coinvolte nelle funzioni specifiche del cono di crescita. Per fare ciò, abbiamo prima separato le proteine dal proencefalo del ratto in via di sviluppo tramite il frazionamento subcellulare per ottenere una frazione GCP (Fig. 1 BIS). Abbiamo quindi ottenuto un GCM tramite trattamento ipotonico della frazione GCP (vedi dettagli nel testo SI) con l’obiettivo di identificare proteine di membrana minori nel cono di crescita. Successivamente, abbiamo utilizzato la cromatografia liquida multidimensionale – spettrometria di massa tandem (LC/MS/MS) per identificare proteine uniche nel campione, perché il metodo ha dimostrato di essere adatto all’identificazione di proteine su larga scala (15, 16). Il metodo si è dimostrato potente anche in questo studio, con un totale di 945 specie di proteine identificate in GCP e GCM (Fig. 1 TER). Poiché <50 delle proteine erano precedentemente note per essere espresse nel cono di crescita dei mammiferi, l’identificazione di questo gran numero di proteine fornisce una ricchezza di informazioni molecolari sui coni di crescita dei mammiferi (2, 4, 17). Per confronto, abbiamo anche analizzato i sinaptosomi adulti, la controparte del cono di crescita, e identificato 1.407 specie di proteine sinaptosomiali (cioè il doppio di quelle che abbiamo trovato per il GCP e il GCM). Circa il 65% delle proteine sinaptosomiali che abbiamo identificato non si trovano nei set GCP o GCM (Fig. 1C), che può essere dovuto al fatto che un gran numero di proteine sono appena sintetizzate e aggiunte ai componenti sinaptici per la trasmissione sinaptica dopo la sinaptogenesi. Siamo riusciti a identificare 96 e 141 proteine nel GCP o nel GCM, rispettivamente, che non sono state trovate nei sinaptosomi (Fig. 1C).

La verifica della localizzazione del cono di crescita suggerisce un tasso di falsi positivi trascurabile.

Abbiamo poi voluto determinare la specificità del nostro approccio proteomica,; cioè, per determinare il tasso di falsi positivi. Generalmente, un confronto di una data frazione dovrebbe essere fatto con un’altra frazione biochimica. Tuttavia, nessuna frazione del cervello in via di sviluppo può essere preparata con purezza paragonabile alle frazioni GCP o GCM. Pertanto, per facilitare la generazione di un set di dati di confronto, abbiamo eseguito l’immunodetezione sistematica di un sottoinsieme delle proteine nei neuroni corticali in coltura (vedere Tabella S4, Tabella S5, Tabella S6 e Tabella S7). Abbiamo escluso proteine ubiquitarie o comunemente espresse come enzimi metabolici e chaperoni molecolari in modo che potremmo invece concentrarci su proteine che potrebbero essere particolarmente rilevanti per le funzioni specifiche del cono di crescita. In totale, abbiamo esaminato le distribuzioni di 131 proteine (cioè ≈15% delle proteine che abbiamo identificato). I dati confermano che nei neuroni corticali di ratto in coltura tutte le proteine che abbiamo testato sono rilevabili nell’area del cono di crescita (Fig. 2 e Tabella S4). In effetti, nessuna proteina che abbiamo testato potrebbe essere rilevata in altre regioni assonali ma non nel cono di crescita, suggerendo un tasso di falsi positivi molto basso e convalidando il nostro approccio generale. Inoltre, i nostri dati proteomici in GCP o GCM non contenevano fattori di trascrizione, suggerendo che anche la contaminazione con componenti nucleari è trascurabile (Fig. 1D, Tabella S1 e Tabella S2).

Fig. 2.

Quantificazione dell’immunofluorescenza di GCP. Asse orizzontale, rapporto FI (cono di crescita / assone distale), Asse longitudinale, rapporto di area (cono di crescita/assone distale). L’asse orizzontale mostra l’indice di accumulo GC (un rapporto di 1,0; la linea tratteggiata nera verticale indica che una data proteina è uniformemente distribuita nell’assone distale rispetto al cono di crescita). Il rapporto FI per GAP-43 (Gap43; 1.315) è mostrato come una linea tratteggiata blu. Le proteine nella regione in alto a destra del grafico sono più concentrate nel cono di crescita che nell’assone. Molte di queste sono proteine leganti l’actina e proteine coinvolte nel traffico vescicolare. Il rapporto FI di ciascuna proteina è stato testato utilizzando il test statistico Kruskal-Willis (46) con GAP-43 come punto di confronto. Le proteine sono state raggruppate in base all’intervallo di confidenza al 95% a due lati, cioè era superiore, simile o inferiore a quello di GAP-43 (mostrato rispettivamente in rosso, blu e nero). Si noti che, come previsto, la F-actina (rilevata con la rhodamina falloidina; in rosso), che è concentrata nel cono di crescita, e la β-tubulina (verde), che si trova a livelli più alti nell’assone rispetto al cono di crescita, sono distanti l’una dall’altra sul grafico. Vedere la Tabella S4 per informazioni dettagliate.

Proteine più concentrate nel cono di crescita che nell’Assone distale.

Abbiamo quindi cercato di determinare la misura in cui le proteine identificate nel nostro studio sono specifiche o localmente specifiche del cono di crescita. Per fare questo, abbiamo confrontato le distribuzioni delle proteine nei coni di crescita con la loro distribuzione negli assoni distali. Nella misura in cui il metodo è quantitativo, siamo stati anche in grado di confrontare le concentrazioni relative di proteine nei coni di crescita rispetto agli assoni distali (Fig. 2 e Tabella S4). Abbiamo definito l’indice di accumulo del cono di crescita come il rapporto tra l’intensità della fluorescenza (FI) nel cono di crescita rispetto a quello nell’assone distale (Fig. 2, Tabella S4, Testo SI e Fig. S1). Abbiamo anche usato un altro indice, cioè il rapporto di area, per esaminare i modelli di distribuzione di ciascuna proteina (Fig. S2). L’indice di accumulo del cono di crescita è un’indicazione del livello relativo di accumulo di proteine nel cono di crescita. Applicando il test statistico Wilcoxon rank-sum ai nostri risultati, facilitando una classificazione rigorosa delle proteine esaminate rispetto a GAP-43, la nostra quantificazione dell’approccio immunostenante sistematico utilizzando questo indice ha rivelato che ben 69 proteine identificate dalla proteomica sono state rilevate a livelli più elevati nell’area del cono di crescita rispetto all’assone distale. Queste proteine sembrano essere a livelli molto più alti nei coni di crescita rispetto al GAP proteico marker cono di crescita attualmente stabilito-43 (7) (Fig. 2, mostrato in rosso). Abbiamo anche scoperto che per 33 proteine le aree di errore statistico si sovrappongono a quella di GAP-43, quindi classifichiamo questo insieme di proteine concentrate nel cono di crescita in misura simile a GAP-43 (Fig. 2, mostrato in blu).

L’analisi RNAi rivela rilevanza per la lunghezza degli assoni e i marcatori funzionali del cono di crescita.

Abbiamo utilizzato un approccio basato su RNAi per testare i ruoli dei candidati alle proteine marker nella crescita assonale. La crescita assonale che induce attività è stata valutata misurando la lunghezza assonale (vedere il testo SI; per la conferma di knockdown e specificità, vedere anche Fig. S1). Abbiamo selezionato 68 geni per il trattamento RNAi e abbiamo scoperto che l’interruzione di 17 di essi ha portato a una lunghezza assonale più breve, mediante l’applicazione di un test non parametrico rigoroso, cioè il test di Kruskal-Willis (Fig. 3A, Tabella 1 e Tabella S8). Classifichiamo le 17 proteine come marcatori di cono di crescita funzionale putativi (Tabella 1). Considerando i risultati dell’immunostenante quantitativo (Fig. 2), queste proteine possono essere classificate in proteine più concentrate di GAP-43 (proteine mostrate in rosso in Fig. 2) o simile a GAP-43 (proteine mostrate in blu in Fig. 2). Di questi 17 proteine, ci sono cinque le proteine del citoscheletro (Tmod2, Cap1, Cotl1, CapZb, e 2 Settembre), quattro traffico di membrana proteine (Pacs1, Stx7, Snap25a, e Rtn1), due GTP-binding proteins (Gnai2, Gnao1), due proteine coinvolte nella piccola G di proteine di segnalazione (Farp2 e Cyfip1), tre di segnalazione scheda di proteine (Cinghia, FABP7, e Crmp1), e uno recettore candidato (Clptm1).

Fig. 3.

Identificazione di NGAP da parte di RNAi. (A) Geni che influenzano la crescita assonale. I ruoli per le proteine identificate nell’attività del cono di crescita sono stati analizzati cercando la riduzione indotta da RNAi della crescita assonale. RNAi è stato eseguito come descritto (45). Le otto proteine a sinistra della linea tratteggiata hanno rapporti FI superiori a GAP-43 come giudicato statisticamente utilizzando il test Kruskal-Willis (rosso; anche mostrato in rosso in Fig. 2), e le nove proteine a destra della linea tratteggiata hanno rapporti FI simili a quello di GAP-43 come giudicato dallo stesso test. Le lunghezze assonali dei neuroni EGFP-positivi (nessun siRNA) sono state utilizzate come controllo (blu; anche mostrato in blu in Fig. 2). Tutti i siRNA (eccetto GFP) hanno P < 0.002 nel test di somma di rango di Wilcoxon (vs. controllo) (46). I dati sono indicati come media ± SEM. Il numero di neuroni misurati è mostrato nella parte inferiore di ogni barra. (B) Classificazione delle proteine marker del cono di crescita candidato mediante immunolocalizzazione. Abbiamo definito i domini C e P di un cono di crescita utilizzando l’analisi quantitativa delle immagini immunostenenti (diagramma in alto; vedi Testo SI e Fig. S2). Abbiamo classificato le proteine in quattro gruppi: gruppo I (es. Pacs1), localizzata prevalentemente nella regione P (C P); gruppo II (es. Syx7), rilevato in entrambe le regioni C e P (C P P); gruppo III (es. Gnai2), prevalentemente localizzata nella regione C (C P P); e gruppo IV (es. Rtn1), specificamente localizzato nella regione C (C). In ogni caso, il diagramma di sinistra è il riassunto di una distribuzione proteica tipica per ciascun gruppo. I micrografi di immunofluorescenza della rilevazione degli anticorpi della proteina anticandidata in neuroni corticali coltivati del ratto sono indicati in A. Magenta e verde mostrano le viste della proteina dell’antigene e della α-tubulina, rispettivamente. Le viste lontane mostrano l’immagine unita. Tre gruppi (gruppi I-III) sono anche mostrati nella legenda per Fig. S4. Si noti che l’α-tubulina viene rilevata principalmente nell’assone, sebbene sia rilevabile anche nella regione centrale del cono di crescita. Vedere la Tabella 1 per una caratterizzazione dettagliata di ciascuna proteina e nomi abbreviati. (Barre di scala: 10 µm.)

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Tabella 1.

Nuovi candidati per nGAPs

La maggior parte dei candidati elencati in Fig. 3A ha rivelato associazioni precedentemente non rilevate con coni di crescita ed erano funzionalmente correlate (Tabella 1). Sept2, Cap1 (una proteina legante G-actina), Snap25a e Cyfip1 sono stati suggeriti per svolgere ruoli nel comportamento del cono di crescita, sulla base di studi sulle cellule PC12 o sui neuroni chick o Drosophila (21-24), ma i loro ruoli precisi nel cono di crescita dei mammiferi non sono noti. Per le due proteine leganti il GTP (Gnai2, Gnao1) e il regolatore (Farp2), è stato riportato un coinvolgimento nella regolazione della risposta di un cono di crescita agli inibitori, sebbene non sia noto se siano necessari o indispensabili per la crescita assonale (25-27). Per quanto ne sappiamo, nessuna delle altre proteine 10 è stata precedentemente segnalata come regolatori del cono di crescita in cellule di mammiferi o organismi modello di invertebrati come C. elegans o Drosophila, sebbene i loro paraloghi possano essere correlati alla crescita dei neuriti . Riassumiamo brevemente le informazioni attuali su queste proteine nella Tabella 1. Al massimo 3 delle 17 proteine identificate nel nostro studio e testate con RNAi sono state precedentemente implicate nella crescita assonale, suggerendo che siamo riusciti a identificare efficacemente molecole aggiuntive coinvolte nelle funzioni del cono di crescita. In totale, i risultati dell’analisi RNAi indicano proteine 17 con rapporti FI più alti o simili rispetto a GAP-43, rendendole candidati forti per nuove proteine associate alla crescita neuronale (nGAPs; refs. 4 e 30).

Il cono di crescita è costituito da regioni morfologicamente e funzionalmente distinte denominate regioni centrali (C) e periferiche (P) (31). La regione C è arricchita in vescicole e microtubuli ed è probabilmente coinvolta nell’espansione della membrana per la crescita assonale. La regione P è arricchita in filamenti di actina e probabilmente genera forza motrice. Utilizzo della tubulina come marker per la regione C (vedi Fig. S3), abbiamo classificato le proteine marker in quattro gruppi: gruppo I, localizzato prevalentemente nella regione P; gruppo II, rilevato in entrambe le regioni; gruppo III, localizzato prevalentemente nella regione C; e gruppo IV, specificamente localizzato nella regione C (Fig. 3B; vedi anche Figg. S3 e S4).

I modelli di localizzazione che abbiamo osservato erano leggermente diversi da quelli che avrebbero potuto essere previsti. Ad esempio, Pacs1 è stato segnalato per essere coinvolto nello smistamento degli organelli, ma negli assoni, Pacs1 si localizza nella regione P, dove la F-actina è arricchita (Fig. 3 TER). Una proteina adattatore solubile putativa, Cinghia, che è stata riportata come a valle della segnalazione TGF-β (32), e Clptm1, una proteina transmembrana sconosciuta (33), sono localizzate anche nella regione P. Al contrario, il 2 settembre viene rilevato vicino alla regione tubulina-positiva nonostante il fatto che in precedenza fosse stato segnalato per essere trovato nel dominio P nelle cellule PC12 (21). Solo Rtn1, una proteina ER e un presunto regolatore del traffico di membrana (34), è stato specificamente localizzato nella regione C, rendendolo potenzialmente utile come marker della regione C.



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