Funktionaalisten merkkiproteiinien tunnistaminen nisäkkäiden kasvukartiossa

johtaa

proteiinien laajamittaiseen tunnistamiseen rotan aivojen Kasvukartioissa.

ensimmäinen tavoitteemme oli tunnistaa suuri määrä kasvukartioissa ilmeneviä proteiineja, mukaan lukien monille solutyypeille yhteiset proteiinit ja kasvukartioiden spesifisiin toimintoihin osallistuvat proteiinit. Tätä varten erotimme ensin kehittyvästä rotan etuaivosta proteiineja solunalaisen fraktioinnin kautta, jotta saatiin GCP-fraktio (Fig. 1 A). Tämän jälkeen saimme GCM: n hypotonisella hoidolla GCP-fraktiolle (KS.yksityiskohdat si-tekstissä) tavoitteena tunnistaa pienet kalvoproteiinit kasvukartiossa. Tämän jälkeen käytimme moniulotteista nestekromatografia-tandem-massaspektrometriaa (LC/MS/MS) yksilöllisten proteiinien tunnistamiseen näytteestä, koska menetelmän on osoitettu soveltuvan laajamittaiseen proteiinien tunnistamiseen (15, 16). Menetelmä osoittautui tehokkaaksi tässäkin tutkimuksessa, sillä GCP: ssä ja GCM: ssä tunnistettiin yhteensä 945 proteiinilajia (Kuva. 1b). Koska <50 proteiinista tiedettiin aiemmin, että ne ilmaistaan nisäkkäiden kasvukartiossa, tämän suuren proteiinimäärän tunnistaminen antaa runsaasti molekyylitietoa nisäkkäiden kasvukartioista (2, 4, 17). Vertailua varten analysoimme myös aikuisten synaptosomeja, kasvukartion vastinetta, ja tunnistimme 1 407 synaptosomiproteiinilajia (eli kaksi kertaa niin paljon kuin GCP: n ja GCM: n osalta). Noin 65% tunnistamistamme synaptosomaalisista proteiineista ei esiinny GCP: ssä tai GCM: n sarjoissa (Kuva. 1C), mikä voi johtua siitä, että suuri määrä proteiineja syntetisoidaan uudelleen ja lisätään synaptisiin komponentteihin synaptogeneesin jälkeen tapahtuvaa synaptista transmissiota varten. Onnistuimme tunnistamaan GCP: stä 96 ja GCM: stä vastaavasti 141 proteiinia, joita ei löytynyt synaptosomeista (Kuva. 1C).

Kasvukartion lokalisoinnin todentaminen viittaa vähäiseen väärien positiivisten tulosten määrään.

halusimme seuraavaksi määrittää proteomiikan lähestymistapamme spesifisyyden, eli määrittää epätosipositiivisuuden. Yleensä tiettyä fraktiota on verrattava toiseen biokemialliseen fraktioon. Kehittyvistä aivoista ei kuitenkaan voida valmistaa fraktioita, joiden puhtaus olisi verrattavissa GCP-tai GCM-fraktioihin. Näin ollen vertailutietojen luomisen helpottamiseksi suoritimme systemaattisen immunodetektion osajoukolle viljellyissä aivokuoren neuroneissa olevista proteiineista (KS.taulukko S4, taulukko S5, taulukko S6 ja taulukko S7). Jätimme pois kaikkialla esiintyvät tai yleisesti ilmentyvät proteiinit, kuten metaboliaentsyymit ja molekyylikassit, jotta voisimme sen sijaan keskittyä proteiineihin, jotka saattavat olla erityisen merkityksellisiä kasvukartion spesifisten toimintojen kannalta. Tarkastelimme yhteensä 131 proteiinin jakaumia (ts. ≈15% tunnistamistamme proteiineista). Tiedot vahvistavat, että rotan aivokuoren hermosoluissa kaikki testaamamme proteiinit ovat havaittavissa kasvukartion alueella (Kuva. 2 ja taulukko S4). Testaamiamme proteiineja ei havaittu muilla aksonaalialueilla, mutta ei kasvukartiossa, mikä viittaa hyvin alhaiseen väärien positiivisten määrään ja vahvistaa yleistä lähestymistapaamme. Lisäksi proteomitiedoissamme GCP: ssä tai GCM: ssä ei ollut transkriptiotekijöitä, mikä viittaa siihen, että kontaminaatio ydinkomponenteilla on myös vähäpätöinen (Fig. 1D, taulukko S1 ja taulukko S2).

viikuna. 2.

GCP: n Immunofluoresenssimääritys. Vaaka-akseli, FI-suhde (kasvukartio/distaalinen aksoni), pituusakseli, pinta-alan suhde (kasvukartio/distaalinen aksoni). Vaaka-akseli osoittaa GC: n kertymäindeksin (suhde 1,0; pystysuora musta katkoviiva osoittaa, että tietty proteiini jakautuu tasaisesti distaaliseen aksoniin kasvukartioon nähden). Gap-43: n FI-suhde (Gap43; 1,315) näkyy sinisenä katkoviivana. Kuvaajan oikean yläosan proteiinit ovat keskittyneempiä kasvukartiossa kuin aksonissa. Monet näistä ovat aktiinia sitovia proteiineja ja vesikulaarikauppaan osallistuvia proteiineja. Kunkin proteiinin FI-suhde testattiin Kruskal-Willis-tilastollisella testillä (46), jossa vertailukohtana oli GAP-43. Proteiinit ryhmiteltiin kaksipuolisen 95%: n luottamusvälin perusteella, eli oliko se korkeampi, samanlainen tai pienempi kuin GAP-43: lla (punaisella, sinisellä ja mustalla). Huomaa, että odotetusti F-aktiini (havaittu rodamiinifalloidiinin kanssa; punaisena), joka on keskittynyt kasvukartioon, ja β-tubuliini (vihreä), joka on korkeammalla tasolla aksonissa kuin kasvukartiossa, ovat kaukana toisistaan kuvaajassa. Katso tarkemmat tiedot taulukosta S4.

proteiineja on enemmän Kasvukartiossa kuin distaalisessa Aksonissa.

yritimme seuraavaksi selvittää, missä määrin tutkimuksessamme tunnistetut proteiinit ovat kasvukartiolle spesifisiä tai paikallisesti spesifisiä. Tätä varten vertasimme proteiinien jakautumista kasvukartioissa niiden jakautumiseen distaalisissa aksoneissa. Siinä määrin kuin menetelmä on kvantitatiivinen, pystyimme myös vertaamaan kasvukartioiden proteiinien suhteellisia pitoisuuksia distaalisiin aksoneihin (viikuna. 2 ja taulukko S4). Määrittelimme kasvukartion kertymäindeksin kasvukartion fluoresenssin intensiteetin (FI) suhteena distaaliseen aksoniin (Fig. 2, taulukko S4, si teksti ja kuva. S1). Käytimme myös toista indeksiä eli pinta-alan suhdelukua tutkiaksemme kunkin proteiinin jakaantumistapoja (Kuva. S2). Kasvukartion kertymisindeksi on osoitus kasvukartion proteiinin suhteellisen kertymisen tasosta. Soveltamalla tilastollista Wilcoxon rank-sum-testiä tuloksiimme, helpottaen tutkittujen proteiinien tiukkaa luokittelua GAP-43: een, systemaattisen immunostisoivan lähestymistavan kvantifiointi tämän indeksin avulla paljasti, että jopa 69 proteomiikan tunnistamaa proteiinia havaittiin korkeammilla tasoilla kasvukartion alueella kuin distaalisessa aksonissa. Nämä proteiinit näyttävät olevan paljon korkeammalla tasolla kasvukartioissa kuin nykyisin vakiintunut kasvukartiomarkkeriproteiini GAP-43 (7) (Kuva. 2, esitetty punaisella). Havaitsimme myös, että 33 valkuaisaineelle tilastolliset virhealueet ovat päällekkäisiä GAP-43: n kanssa, joten luokittelemme tämän valkuaisainejoukon keskittyneeksi kasvukartioon samassa määrin kuin GAP-43 (Kuva. 2, esitetty sinisellä).

RNAi-analyysi paljastaa relevanssin Kasvukartion Aksonipituuteen ja funktionaalisiin markkereihin.

käytimme RNAi-pohjaista lähestymistapaa testataksemme markkeriproteiinikandidaattien roolia aksonaalisessa kasvussa. Aktiivisuutta indusoiva aksonaalinen kasvu arvioitiin mittaamalla aksonaalinen pituus (KS.SI-teksti; knockdownin ja spesifisyyden varmistaminen KS. myös kuva. S1). Valitsimme 68 geeniä RNAi-hoitoon ja havaitsimme, että 17: n häiriöt johtivat lyhyempään aksonaaliseen pituuteen soveltamalla tiukkaa nonparametrista testiä eli Kruskal-Willis-testiä (Kuva. 3A, Taulukko 1 ja taulukko S8). Luokittelemme 17 proteiinia oletettaviksi funktionaalisiksi kasvukartion markkereiksi (Taulukko 1). Kvantitatiivisten immunostisoivien tulosten huomioon ottaminen (Kuva. 2), nämä proteiinit voidaan luokitella proteiineihin, jotka ovat keskittyneempiä kuin GAP-43 (proteiinit näkyvät punaisella Kuvassa. 2) tai samanlainen kuin GAP-43 (proteiinit kuvassa sinisenä. 2). Näistä 17 proteiinista on viisi sytoskeletaaliproteiinia (Tmod2, Cap1, Cotl1, CapZb ja Sept 2), neljä kalvoproteiinia (Pacs1, Stx7, Snap25a ja Rtn1), kaksi GTP: tä sitovaa proteiinia (Gnai2, Gnao1), kaksi pientä G-proteiinin signalointiin osallistuvaa proteiinia (Farp2 ja Cyfip1), kolme signalointisovitinproteiinia (Strap, FABP7 ja Crmp1) ja yksi reseptorikandidaatti (Clptm1).

viikuna. 3.

nGAPs: n tunnistaminen RNAi: n avulla. A) aksonaaliseen kasvuun vaikuttavat geenit. Tunnistettujen proteiinien roolit kasvukartion aktiivisuudessa määritettiin etsimällä RNAi: n aiheuttamaa aksonaalisen kasvun vähenemistä. RNAi suoritettiin kuvatulla tavalla (45). Kuoriutuneen viivan vasemmalla puolella olevien kahdeksan proteiinin FI-suhde on parempi kuin GAP-43, joka arvioidaan tilastollisesti Kruskal-Willis-testin avulla (punainen; esitetty myös punaisella kuviossa. 2), ja kuoriutuneen viivan oikealla puolella olevilla yhdeksällä proteiinilla on FI-suhde, joka vastaa samassa testissä arvioitua GAP-43: n suhdetta. Kontrollina käytettiin EGFP-positiivisten neuronien aksonipituuksia (ei sirnaa) (sininen; näkyy myös sinisellä kuviossa. 2). Kaikilla sirnoilla (GFP: tä lukuun ottamatta) P < 0, 002 wilcoxonin rank-sum-testissä (vs. kontrolli) (46). Tiedot esitetään keskiarvona ± sem. Mitattujen neuronien määrä näkyy jokaisen palkin alareunassa. B) kasvukartiomarkkeriproteiinien luokittelu immunolokalisaatiolla. Määritimme kasvukartion C-ja P-domeenit immunostisoivien kuvien kvantitatiivisella analyysillä (kaavio ylhäällä; katso si-teksti ja kuva. S2). Luokittelimme proteiinit neljään ryhmään: ryhmään I (ENT. PACS 1), pääasiassa paikallisesti P-alueella (C P); ryhmä II (ENT. Syx7), havaittu sekä C-että P-alueilla (C ≃ P); ryhmä III (ENT. Gnai2), pääasiassa C-alueelle (C ≫ P) ja ryhmään IV (ENT. Rtn1), erityisesti lokalisoitu C-alueelle (C). Kussakin tapauksessa vasemmanpuoleinen kaavio on yhteenveto tyypillisestä proteiinijakaumasta kullekin ryhmälle. Immunofluoresenssimikragrafit antikandidaattiproteiinin vasta-aineiden toteamisesta rotan viljellyissä aivokuoren neuroneissa on esitetty A. Magenta-ja green-tutkimuksissa antigeeniproteiini-ja α-tubuliininäkymissä. Kaukonäkymissä näkyy yhdistetty kuva. Kolme ryhmää (ryhmät I-III) on myös esitetty legenda Fig. S4. Huomaa, että α-tubuliini havaitaan ensisijaisesti aksonissa, vaikka sitä on havaittavissa myös kasvukartion keskialueella. KS. Taulukko 1 kunkin proteiinin yksityiskohtainen luonnehdinta ja lyhennetyt nimet. (Asteikkotangot: 10 µm.)

Katso tämä taulukko:

  • Näytä rivi
  • Näytä ponnahdusikkuna
Taulukko 1.

uusia nGAPs – ehdokkaita

suurin osa ehdokkaista lueteltu Fig. 3A havaittiin aiemmin havaitsemattomia yhteyksiä kasvukartioiden kanssa ja ne liittyivät toiminnallisesti toisiinsa (Taulukko 1). Sept2: n, Cap1: n (g-aktiinia sitova proteiini), Snap25a: n ja Cyfip1: n on ehdotettu näyttelevän roolia KASVUKARTION käyttäytymisessä PC12-soluissa tai poikasen tai Drosophila-neuroneissa (21-24) tehtyjen tutkimusten perusteella, mutta niiden tarkkaa roolia nisäkkäiden kasvukartiossa ei tunneta. Kahden GTP: tä sitovan proteiinin (Gnai2, Gnao1) ja säätelijäproteiinin (Farp2) on raportoitu osallistuvan inhibiittorien aiheuttaman kasvukartion säätelyyn, vaikka ei tiedetä, ovatko ne aksonaalisen kasvun kannalta välttämättömiä (25-27). Parhaan tietomme mukaan yhdenkään muun 10 proteiinin ei aiemmin raportoitu olevan kasvukartion säätelijöitä nisäkässoluissa tai selkärangattomissa malliorganismeissa, kuten C. elegansissa tai Drosophilassa, joskin niiden paralogit saattavat liittyä neuriittien kasvuun . Tiivistämme lyhyesti tämänhetkiset tiedot näistä proteiineista taulukossa 1. Enintään 3 tutkimuksessamme tunnistetuista ja RNAi: lla testatuista 17 proteiinista on aiemmin yhdistetty aksonaaliseen kasvuun, mikä viittaa siihen, että onnistuimme tunnistamaan tehokkaasti muita kasvukartion toimintoihin osallistuvia molekyylejä. RNAi-analyysin tulokset viittaavat yhteensä 17 proteiiniin, joilla on suurempi tai samankaltainen FI-suhde kuin GAP-43: lla, mikä tekee niistä vahvoja ehdokkaita uusille hermosolukasvuun liittyville proteiineille (nGAPs; refs). 4 ja 30).

kasvukartio koostuu morfologisesti ja toiminnallisesti erillisistä alueista, joita kutsutaan keskus – (C) ja reuna – (P) alueiksi (31). C-alue on rikastunut vesikkeleillä ja mikrotubuluksilla ja on todennäköisesti mukana kalvon laajenemisessa aksonaalikasvua varten. P-alue on rikastettu aktiinifilamenteilla ja todennäköisesti se tuottaa motiivivoimaa. Tubuliinin käyttäminen C-alueen merkkiaineena (KS. S3), luokittelimme merkkiproteiinit neljään ryhmään: ryhmä I, lokalisoitu pääasiassa P-alueella; ryhmä II, havaittu molemmilla alueilla; ryhmä III, lokalisoitu pääasiassa C-alueella; ja ryhmä IV, erityisesti lokalisoitu C-alueella (Kuva. 3B; Katso myös viikunoita. S3 ja S4).

havaitsemamme lokalisaatiomallit poikkesivat jonkin verran siitä, mitä olisi voitu ennustaa. Esimerkiksi Pacs1: n on raportoitu osallistuvan organellilajitteluun, mutta aksoneissa Pacs1 paikallistaa P-alueelle, jossa f-aktiini rikastuu (Fig. 3b). P-alueella on myös paikallinen liukeneva adapteriproteiini, Strap, jonka on raportoitu olevan TGF-β-signaloinnin (32) loppupäässä, ja clptm1, tuntematon transmembraaniproteiini (33). Sitä vastoin 2. syyskuuta havaitaan lähellä tubuliinipositiivista aluetta, vaikka sitä aiemmin raportoitiin olevan P-domeenissa PC12-soluissa (21). Ainoastaan Rtn1, ER-proteiinin ja oletetun kalvojen salakuljetuksen säätelijä (34), paikallistettiin erityisesti C-alueelle, mikä tekee siitä mahdollisesti käyttökelpoisen C-alueen merkkiaineena.



+